Research group 4: Reproductive biology
 
 

 

Service

 

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Hormonservice am IZW

nutzen Sie diese Möglichkeiten für Ihre Arbeit an Nutz-, Zoo-und Wildtieren!

Das Endokrinologielabor des Instituts für Zoo und Wildtierforschung (IZW) bietet als Service die Messung von Steroidhormonen in Blutplasma bzw. in Urin- und Kotproben (nicht-invasives Hormonmonitoring) an. Wir messen die Hormone Progesteron, Östradiol, Testosteron, Cortisol und Corticosterone  bzw. deren Metaboliten in Urin und Kot.

Blutproben
Voraussetzung für die Messungen von Progesteron, Testosteron und Cortisol/Corticosterone im Blutplasma ist ein Probevolumen von mindestens 50 ?l. Für die Analyse von Östradiol benötigen wir aufgrund der niedrigen Konzentrationen (im pg Bereich) mindestens 0,2 ml Blutplasma.

Urin- und Kotproben
Für die Messungen in Urin benötigen wir ca. 1 ml Urin, für die Analysen in Kot werden 0.5 g Kot eingesetzt. Bei kleineren Säugetieren und Vögeln können die Probemengen minimiert werden. Die Proben müssen sofort nach der Entnahme bei -20°C eingelagert werden, ansonsten kann es im Kot zu Veränderungen der Konzentrationen aufgrund mikrobieller Aktivitäten kommen.

Voraussetzungen
Bitte bedenken Sie auch, dass die Sekretion von Cortisol/Corticosterone einem diurnalen und pulsatilen Muster folgt. Mithin ist es unmöglich, anhand einer Probe etwas über den Stresszustand eines Tieres auszusagen. Hier sind Probennahmen über einen längeren Zeitraum notwendig.
Dies gilt auch für das Reproduktionsmonitoring. Ein hoher Progesteronwert im Blutplasma bzw. in Urin oder Kot ist kein Indikator für eine Trächtigkeit, er kann ebenso aus der Lutealphase des Ovarzyklus entstammen. Hier ist eine Probenahme über einen Zeitraum, der mindesten eine Zykluslänge umfasst, zwingend notwendig. Nur anhaltend hohe Konzentrationen weisen auf eine Trächtigkeit hin.

Einschränkungen
Jede Tierart betreibt ihren eigenen speziesspezifischen Metabolismus von Hormonen. Daher können wir das nicht-invasive Hormonmonitoring nur für die Tierarten anbieten, bei denen wir bereits Erfahrung bzw. etablierte Methoden zur Verfügung haben.
Bitte bedenken Sie auch, dass Sie, wenn sie diese Ergebnisse in einem wissenschaftlichen Journal publizieren wollen, i. d. R. eine Testevaluierung und eine biologische Validierung nachweisen müssen.

Kosten
 

Blutproben (Direktmessung)

5,00 €

Blutproben (inklusive Extraktion)

6,50 €

Urinproben (inklusive Hydrolyse und Extraktion)

6,50 €

Kotproben (inklusive Extraktion)

9,00 €

Wir sind ständig dabei, unser analytisches Spektrum um weitere Tierarten zu erweitern. Bei Tierarten, für die wir noch keine Expertise haben, sind Testentwicklung, Testevaluierung und biologische Validierung notwendig, die wir nur im Rahmen einer Kooperation mit ihrer Kostenbeteiligung leisten können.
Falls Sie Interesse an der Messung von Hormonen im Rahmen Ihrer Forschung bzw. ihrer Routinediagnostik haben, setzen Sie sich bitte mit dem Endokrinologielabor des IZW´s in Verbindung.

Dr. M. Dehnhard

M. Rohleder

Tel.: (+49)30-5168-615

Tel.: (+49)30-5168-621

Fax: (+49)30-5126-104

Fax: (+49)30-5126-104

dehhard@izw-berlin.de

rohleder@izw-berlin.de



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Hormonservice at the IZW

use our expertise for your research on domestic, zoo and wild animals

The endocrine lab of the Leibniz Institute for Zoo and Wildlife Research (IZW) offers the measurement of steroid hormones in blood plasma and urine and fecal samples (non-invasive monitoring of hormones) on a service basis. We are able to analyse progesterone, estradiol, testosterone, cortisol, and corticosterone and their metabolites in urine and feces.

Blood samples
To analyse progesterone, testosterone, cortisol, and corticosterone we need a minimum amount of 50 ?l plasma. For the analysis of estradiol we need 0.2 ml plasma due to the low estradiol concentrations (in the pg range).

Urine and fecal samples
For measurements in urine we ask for 1 ml of urine. For the analysis of fecal samples we use 0.5 g. In case of small mammals or birds sample amounts may be reduced. All samples have to keep frozen (-20°C) immediately following its collection, otherwise changes in metabolite concentrations may occur due to microbial activities.

Prerequisites
Please keep in mind that the secretion of cortisol / corticosterone follows diurnal and pulsatile patterns. Therefore, it is impossible to objectify adrenal activity (stress) in an animal based on a single sample. Therefore, samples should be collected over a longer time period.
The same applies for reproductive monitoring. A single elevated progesterone concentration in samples of plasma, urine or feces does not necessarily indicate pregnancy, it may as well indicate the luteal phase of a cycling female. Thus a sample collection period exceeding the length of an ovarian cycle is necessary. To confirm pregnancy persisting high progesterone concentrations are required.

Limitations
Each animal species uses its specific way to metabolize steroids. To this so called biological validation of a non-invasive hormone measurement must be performed before a particular assay can be applied for monitoring reproductive activity in a valuable animal. Therefore we are unable to offer non-invasive hormone monitoring for each species. We can offer this service only for species where we already have experiences or ready-to-use analytical methods.
Please note, that in case you aim to publish the results in a scientific journal the referees most likely ask for assay evaluation and biological validation.

Costs

Blood sample (direct measurement)

5.00 €

Blood sample (measurement demanding extraction)

6.50 €

Urine samples (inclusive hydrolysis and extraction)

6.50 €

Fecal samples (inclusive extraction)

9.00 €

We are always busy to validate the techniques for more mammal species. If we have no analytical expertise for a species you are interested, assay development and validation are essential. This can be performed within the scope of cooperation and cost sharing.
If you are interested on our hormone service for research or routine diagnostic please contact the endocrine lab of the IZW.

Dr. M. Dehnhard

M. Rohleder

Phone: (+49)30-5168-615

Phone: (+49)30-5168-621

Fax: (+49)30-5126-104

Fax: (+49)30-5126-104

dehhard@izw-berlin.de

rohleder@izw-berlin.de



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Evaluation of sperm quality

Sperm quality essentially determines the success of artificial insemination techniques (e. g. artificial insemination, In vitro fertilisation, ICSI). A comprehensive evaluation of semen quality is also helpful to assess the fertilizing ability of male gametes in vivo. The following methods are basically available but partly need modifications according to the requirements of newly investigated species.
* Evaluation of sperm morphology
* Computer-assisted measurement of motility parameters (SpermVision), see the video
* Fluorescence based analysis of sperm properties (viability, membrane intactness, activity of mitochondria) and sperm function (capacitation, induction of acrosome reaction)


Figure: Non-stained elephant spermatozoa (1) are viable and intact, dead spermatozoa are stained red by propidiumiodide (2, 3), the acrosomal head region of membrane-defect spermatozoa is stained green by FITC-labeled peanut agglutinin (3). The two spermatozoa in the upper part are out of focus

 

 

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